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組織病理切片的制作過程
發(fā)布時(shí)間:2014/1/16
 

1.取材組織取材的方法是制作切片的一個(gè)重要程序,根據(jù)教學(xué)、科研及外檢的具體要求取自人體(外科手術(shù)切除標(biāo)本、活檢標(biāo)本、尸檢標(biāo)本)或動(dòng)物,并確定取材的部位和方法。取材者需要掌握解剖學(xué)、組織學(xué)、病理學(xué)的基本理論知識(shí),還要掌握實(shí)際操作技術(shù),每個(gè)組織器官的取材都有一定的部位和方法,不能任意切取組織作為制片材料,不然,無法達(dá)到教學(xué)、科研和臨床診斷的目的,具體要求如下:

(1)材料新鮮:取材組織愈新鮮愈好,人體組織一般在離體后,動(dòng)物組織在處死后迅速固定,以保證原有的形態(tài)學(xué)結(jié)構(gòu)。

(2)組織塊的大?。核〗M織塊較理想的體積為2.0cm×2.0cm×0.3cm,以使固定液能迅速而均勻地滲入組織內(nèi)部,但根據(jù)制片材料和目的不同,組織塊的較理想體積也不同,如制作病理外檢、科研切片,其組織塊可以薄取0.1~0.2cm即可,這樣可以縮短固定脫水透明的時(shí)間,若制作教學(xué)切片厚取0.3 ~0.5cm,這樣可以同一蠟塊制作出較多的教學(xué)切片。

(3)勿擠壓組織塊: 切取組織塊用的刀剪要鋒利,切割時(shí)不可來回銼動(dòng)。夾取組織時(shí)切勿過緊,以免因擠壓而使組織、細(xì)胞變形。

(4)規(guī)范取材部位: 要準(zhǔn)確地按解剖部位取材,病理標(biāo)本取材按照各病變部位、性質(zhì)的不同,根據(jù)要求規(guī)范化取材。

(5)選好組織塊的切面:根據(jù)各器官的組織結(jié)構(gòu),決定其切面的走向??v切或橫切往往是顯示組織形態(tài)結(jié)構(gòu)的關(guān)鍵,如長(zhǎng)管狀器官以橫切為好。

(6)保持材料的清潔:組織塊上如有血液、污物、粘液、食物、糞便等,可用水沖洗干凈后再放入固定液中。

(7)保持組織的原有形態(tài):新鮮組織固定后,或多或少會(huì)產(chǎn)生收縮現(xiàn)象,有時(shí)甚至完全變形。為此可將組織展平,以盡可能維持原形。

2.固定

(1)小塊組織固定法:這是最常用的方法,從人體或動(dòng)物體取下的小塊組織,須立即置入液態(tài)固定劑中進(jìn)行固定,通常,標(biāo)本與固定液的比例為1:4~20,但組織塊不宜過大過厚,否則固定液不能迅速滲透。故取組織塊的大小一般為2.0cm×2.0cm×0.3cm。

(2)注射、灌注固定法:某些組織塊由于體積過大或固定液極難滲入內(nèi)部,或需要對(duì)整個(gè)臟器或整個(gè)動(dòng)物體進(jìn)行固定。這時(shí)宜采用注射固定或灌注固定法。將固定液注入血管,經(jīng)血管分支到達(dá)整個(gè)組織和全身,從而得到充分的固定。

(3)蒸汽固定法:比較小而厚的標(biāo)本,可采用鋨酸或甲醛蒸汽固定法。如血液涂片,則應(yīng)在血片未干燥前采用鋨酸或甲醛蒸汽接觸固定。

最常用的固定液有10%甲醛固定液和95%乙醇固定液。

3.脫水透明標(biāo)本經(jīng)過固定和沖洗后,組織中含有較多的水分,必須將組織塊內(nèi)的水分置換出來,這一過程叫做脫水。無論是用石蠟切片,還是用火棉膠切片,都必須除去組織中所含水分,因含水組織與石蠟、火棉膠等包埋材料不相容,常用的脫水劑為一系列不同濃度的乙醇。

脫水的步驟是:80%、90%、95%、100%各種濃度乙醇2小時(shí),此過程可用脫水機(jī)自控完成。

丙酮也是一種脫水能力很強(qiáng)的脫水劑,但因其脫水能力很強(qiáng),對(duì)組織有劇烈收縮作用,在制作科研、教學(xué)切片時(shí)一般不用該試劑。因乙醇、丙酮等不溶于石蠟,還要經(jīng)過一個(gè)能溶于石蠟的溶劑替代過程稱為透明。常用的透明劑有二甲苯、三氯甲烷、水楊酸甲酯等。

4.浸蠟、包埋

(1)使石蠟浸入組織中,取代組織中含有的透明劑。

(2)包埋:將浸蠟后的組織置于融化的固體石蠟中,石蠟?zāi)毯?,組織即被包在其中,稱蠟塊,此過程稱為包埋。

5.切片和貼片

(1)修整蠟塊:可視其組織的大小,在組織邊緣約0.1~0.2cm處,切去余蠟部分,否則易造成組織皺縮不平。

(2)準(zhǔn)備好切片用具:切片刀、毛筆、眼科鑷子(彎)、漂烘溫控儀

(3)安裝蠟塊:將修好的蠟塊安裝在金屬或木制持蠟器上。

(4)安裝切片刀:將切片刀安裝在切片機(jī)的刀臺(tái)上,把刀臺(tái)上的緊固螺絲旋緊,使切片時(shí)不產(chǎn)生振動(dòng),能保持一定的切片厚度。

(5)切片的厚度:切片機(jī)的厚度調(diào)節(jié)器上刻有0~50μm或0~25μm,可任意選擇其厚度,石蠟切片的厚度一般在4~6μm。

(6)切片

(7)鋪片:用眼科鑷子鑷起蠟帶輕輕平鋪在40~45℃的水面上,借水的張力和水的溫度,將略皺的蠟帶自然展平。

(8)貼片、烘片:待切片在恒溫水面上充分展平后,將蠟片撈到載玻片的中段處傾去載玻片上的余水,置入60~65℃恒溫箱內(nèi)或切片漂烘溫控儀的烘箱內(nèi)烤片15~30分鐘,脫去溶化組織間隙的石蠟。

6.染色和封片常用的染色方法是蘇木素-伊紅(Hematoxylin-Eosin)染色法,簡(jiǎn)稱H.E染色法。這種方法對(duì)任何固定液固定的組織和應(yīng)用各種包埋法的切片均可使用。蘇木素是一種堿性染料,可使組織中的嗜堿性物質(zhì)染成藍(lán)色,如細(xì)胞核中的染色質(zhì)等;伊紅是一種酸性染料,可使組織中的嗜酸性物質(zhì)染成紅色,如多數(shù)細(xì)胞的胞質(zhì)、核仁等在H.E染色的切片中均呈紅色。

H.E染色程序如下:脫蠟、脫苯、復(fù)水、染色、脫水、透明、封固

常規(guī)蘇木素染色中的對(duì)比染色是用伊紅,近年來在英、美國(guó)家的一些實(shí)驗(yàn)室則采用焰紅(phloxine),此外也有用桔黃G(OrangeG)、比布里希猩紅(Biebrich scarlet)、波爾多紅(Bordeaux red)等作為對(duì)比染色。伊紅為染胞質(zhì)、膠原纖維、肌纖維、嗜酸性顆粒等常用的染料。

 
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